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 分類: 基因組測序

DNA測序技術(shù)在過去的40年中,經(jīng)歷了巨大的改進(jìn)與變化。早在1977年,首次報道了Sanger和Maxam–Gilbert測序方法,Sanger測序的最大序列長度約1 kb。其對DNA總量的要求較高,一般通過克隆靶標(biāo)DNA序列并連接載體,進(jìn)而通過原核細(xì)胞大腸桿菌(E. coli)擴(kuò)增(當(dāng)時基因組De novo采用BAC文庫測序方式),其讀長短且耗時;NGS(Next-Generation Sequencing )二代測序包含很多技術(shù)平臺,其特征是對大量的DNA分子并行測序,多年來已有4個主要的NGS平臺投入商業(yè)使用:羅氏454平臺, Illumina GA/Solexa 平臺, ABI SOLiD平臺和Life Torrent平臺。在過去的10年中,Illumina因其低成本,高速和高產(chǎn)而成為測序市場的主要供應(yīng)商,Illumina測序平臺具有廣適性,因此NGS已廣泛用于探索基因組學(xué)的各個領(lǐng)域,包括腫瘤學(xué),微生物學(xué),環(huán)境基因組學(xué),宏基因組學(xué)及醫(yī)學(xué),環(huán)境和農(nóng)業(yè)研究等,隨時其廣泛的應(yīng)用,其劣勢也逐漸的突顯,即:二代測序(Illumina為代表)讀長短仍然是生物學(xué)研究的重要瓶頸,這限制了許多生物學(xué)研究的準(zhǔn)確性,尤其是在基因組組裝研究中。在片段重復(fù)(segmental duplication),結(jié)構(gòu)變異(SV,structural variations)或旁系同源區(qū)段分析中使用短讀長測序可能會導(dǎo)致大量假陽性。盡管測序技術(shù)和生物信息學(xué)分析在進(jìn)步,但大型基因組的從頭組裝仍然具有挑戰(zhàn)性。自2015年起,以PacBio和Nanopore為代表的長讀長測序技術(shù)開始在動植物基因組De novo中初露鋒芒(圖1 A和B)。

圖1 不同測序技術(shù)讀長,準(zhǔn)確性及基因組連續(xù)性評估

一、三代長讀長單分子測序技術(shù)的發(fā)展

?長讀長單分子測序技術(shù)(Long read single-molecule sequencing technology)又稱第三代測序技術(shù)TGS(Third-Generation Sequencing),早在2004年,由美國太平洋生物科學(xué)公司Pacific Biosciences (PacBio)?創(chuàng)立的實時(SMRT)測序是較早被廣泛使用的長讀測序技術(shù),SMRT測序產(chǎn)生的Reads可達(dá)到約200 kb。其提供了技術(shù)上的優(yōu)勢,以鑒定遺傳變異并進(jìn)一步研究其基因功能,同時作為動植物基因組組裝日臻進(jìn)步完善的主要驅(qū)動力,自2015年,首篇純PacBio三代數(shù)據(jù)組裝復(fù)活草(Nature. 2015)基因組見刊Nature,開啟了三代動植物基因組De novo的紀(jì)元。與Sanger測序和NGS測序類似,PacBio測序同樣采用邊合成邊測序的方式,以其中一條DNA鏈為模板,通過DNA聚合酶合成另外一條鏈(圖2 A和B)。PacBio測序平臺相繼推出RS II,Sequel和Sequel II平臺并投入使用(Table 1)。2005年,英國牛津納米孔技術(shù)公司

圖2 三代PacBio測序原理

Oxford Nanopore ?Technologies(ONT)創(chuàng)立了單分子納米孔測序,其主要原理是當(dāng)單鏈DNA/RNA分子的核酸堿基蛋白納米孔時(固定在鹽溶液浸沒膜上的蛋白質(zhì)納米孔,固定膜上施加了固定電壓),通過創(chuàng)新的技術(shù)識別離子電流的微小變化,即:當(dāng)DNA分子穿過納米孔時,相對于每個核苷酸,都會獲得不同的電流信號。記錄每個孔的離子電流變化,并基于馬爾可夫模型或遞歸神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)的方法將其轉(zhuǎn)換為堿基序列(圖3)。其優(yōu)勢之一是支持RNA直接測序,除此之外,Ultra-long reads (ULRs) 是ONT平臺的另一重要特征,并具有促進(jìn)大型基因組組裝的潛力。Nanopore測序平臺相繼推出MinION,GridION,PromethION及Flongle平臺并投入使用(Table 2)。
圖3 三代Nanopore測序原理

二、三代長讀長單分子測序技術(shù)PacBio和Nanopore的比較

PacBio和Nanopore具有共同的優(yōu)點,即長讀長;同時也具有共同的缺點即高錯誤率(糾錯前隨機(jī)分布的?5–20%堿基錯誤率),隨著新測序儀和生物信息學(xué)的不斷發(fā)展,測序平臺的優(yōu)缺點有望發(fā)生改變,無論是PacBio還是ONT測序平臺都致力于獲得更長讀長的reads的同時,兼獲高準(zhǔn)確的堿基序列信息。

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圖4 PacBio與Nanopore測序原理及信號識別原理比較
PacBio CCS高精準(zhǔn)測序:早在2017年,研究人員分別利用了PacBio和Nanopore平臺測序進(jìn)行了酵母基因組De novo,進(jìn)一步發(fā)現(xiàn)PacBio測序平臺的準(zhǔn)確性略高于Nanopore測序平臺(Giordano et al. 2017)。為了解決PacBio較高錯誤率的問題,PacBio已升級了CCS測序模式以獲得長讀長的高保真(HiFi)15 kb reads,Circular Consensus Sequencing (CCS) read: 環(huán)形一致性序列,這種一致性序列通過對來自單個ZMW中的subreads進(jìn)行比對產(chǎn)生。產(chǎn)生的CCS reads使用CCS算法需要至少三輪讀取來自插入片段的subreads,單條CCS read準(zhǔn)確性可達(dá)99%以上(圖5)。Sequel II System 2.0版本試劑雖然使得HiFi文庫的插入片段長度提升至15-20 kb,從而更好的支持基因組從頭組裝,但是對于組裝來說,長度仍有較大的提升空間。
圖5 PacBio CCS測序原理及準(zhǔn)確性評估

Nanopore超長讀長測序:盡管組裝方法不斷在改進(jìn),且已開發(fā)物理圖譜技術(shù)(光學(xué)圖譜),但讀長長短仍然是高質(zhì)量動植物基因組的限制因素。如植物基因組由于高雜合,及其復(fù)雜的多倍性和高重復(fù)含量,其組裝仍然具有挑戰(zhàn)性,讀長必須超過基因組中的主要重復(fù)序列長度,及嵌合的長末端重復(fù)序列(LTR)或單倍型Blocks,其長度可能跨越20–200 kb。雖然PacBio是提供Long Reads(>1 kb)的技術(shù),且通常 Reads N50長度可大于20 kb,但即便是幾乎完美的15 kb reads可能無法組裝復(fù)雜植物基因組中經(jīng)常出現(xiàn)的嵌合及高度相似的重復(fù)序列。而ONT測序平臺大大解決了這一問題,與PacBio reads平均長度項目(圖6),一小部分ONT reads讀長超過300 kb,同時PacBio不包含任何大于150 kb的reads。許多復(fù)雜的植物基因組具有大于20 kb或更長的重復(fù)序列,所以即便目前ONT具有一定錯誤率,但其大大促進(jìn)了基因組的組裝,從而顯著提高了基因組連續(xù)性或完整性。例如:使用ONT測序更新的擬南芥Col-0基因組最終通過組裝,減少到40個Contigs,且跨越了染色體臂(端粒到著絲粒),同時解決了前期在TAIR10參考基因組中存在的gaps及組裝錯誤(Jupe et al. 2020)。

圖6 三代Nanopore和PacBio測序讀長比較

三、百邁客雙平臺(Nanopore+PacBio)動植物基因組De novo研究策略—魚和熊掌可兼得

“魚,我所欲也,熊掌亦我所欲也;二者不可得兼,舍魚而取熊掌者也。正如在動植物基因組研究中,針對基因組組裝,為了兼顧長讀長的同時,獲得高準(zhǔn)確性的物種基因組密碼信息,在選擇測序技術(shù)選擇(PacBio or Nanopore?)上總會有魚和熊掌不可兼得的感覺。長久以來,百邁客一直致力于成為“專業(yè)的基因組組裝專家”,擁有雙平臺的基礎(chǔ)上(2015年首次引進(jìn)PacBio平臺;2017年首次引進(jìn)Nanopore平臺),力求整合雙平臺各自的優(yōu)勢,著力于開發(fā)各種軟件、算法,為每個物種提供訂制的“基因組套餐”,即打造高質(zhì)量,高完整性的物種基因組。從本章節(jié)起,小編后續(xù)會結(jié)合新的技術(shù)策略、測試數(shù)據(jù)及文章案例,為大家?guī)砣碌幕蚪M研究策略,旨在獲得高度連續(xù)性基因組的前提下,同時完成高準(zhǔn)確性動植物基因組密碼的破譯,即魚與熊掌可兼得。

首先通過百邁客三代Nanopore和PacBio平臺相關(guān)物種測序讀長(表1)及組裝結(jié)果的比較(表2),進(jìn)一步通過我們的實際案例來看一下Nanopore測序平臺在基因組組裝中的優(yōu)勢。

表1 Nanopore與PacBio平臺實測物種數(shù)據(jù)讀長比較

通過雙平臺實測數(shù)據(jù)的比較分析: Nanopore平臺平均讀長為28.5 Kb左右,Reads N50平均讀長 38Kb左右;PacBio CLR平均讀長20 Kb左右,Reads N50平均讀長 28Kb左右;CCS平均讀長12-15 Kb,Reads N50 16~18Kb,發(fā)現(xiàn)Nanopore比PacBio平臺讀長高10 Kb左右,而PacBio CCS模式讀長遠(yuǎn)低于CLR模式。

同時通過PacBio和Nanopore雙平臺測序數(shù)據(jù)組裝結(jié)果的比較發(fā)現(xiàn),利用PacBio數(shù)據(jù)進(jìn)行基因組組裝Contig N50一般達(dá)到Mb級別,而利用Nanopore數(shù)據(jù)進(jìn)行基因組組裝,Contig N50指標(biāo)平均水平基本能再提升2倍或者更高,甚至許多物種能達(dá)到幾十Mb(如百邁客利用Nanopore測序平臺組裝的水產(chǎn)動物綠鰭馬面鲀基因組,Contig N50高達(dá)22 Mb)。

表2?Nanopore與PacBio平臺實測物種組裝指標(biāo)比較

由于Nanopore測序Reads讀長長,PacBio Sequel II HiFi模式測序準(zhǔn)確性高達(dá)99%以上,為了同時利用其雙平臺各自的優(yōu)勢,我們擬通過Nanopore測序數(shù)據(jù)對某多倍體植物進(jìn)行基因組組裝,同時通過低深度PacBio CCS數(shù)據(jù)進(jìn)行Polish,進(jìn)而對該多倍體植物基因組連續(xù)性,完整性及準(zhǔn)確性進(jìn)行評估,以獲得高連續(xù)性,高準(zhǔn)確的基因組密碼信息,測試結(jié)果如下:

1. 某多倍體植物組裝基本信息
2.?采用不同深度下的PacBio CCS數(shù)據(jù)進(jìn)行Polish,然后利用真核有胚植物數(shù)據(jù)庫對不同深度PB CCS Polish的結(jié)果進(jìn)行BUSCO完整性評估,以獲得最佳的CCS數(shù)據(jù)矯正深度,分析結(jié)果如下:
分別利用5x,10x,15x和20x的PacBio CCS數(shù)據(jù)進(jìn)行Polish,發(fā)現(xiàn)當(dāng)利用10xCCS數(shù)據(jù)進(jìn)行Polish后,隨著CCS數(shù)據(jù)深度的增加(15x,20x),BUSCO完整性比率無進(jìn)一步提升,基本在97.43%左右,通過CCS數(shù)據(jù)矯正的梯度設(shè)置,進(jìn)一步證明了10x PacBio CCS數(shù)據(jù)足以保證基因組完整性評估。
3.?采用不同測序平臺數(shù)據(jù)對Nanopore原始組裝結(jié)果進(jìn)行Polish,進(jìn)而利用真核有胚植物數(shù)據(jù)庫進(jìn)行BUSCO完整性評估,完整性比對結(jié)果如下:
通過比較Nanopore數(shù)據(jù)原始組裝、Nanopore Polish、Nanopore Polish+二代Polish及PacBio CCS Polish后基因組的完整性,發(fā)現(xiàn)基因組的BUSCO完整性比例逐漸升高,分別為:77.01%,93.96%,95.28%和97.43%,當(dāng)利用10 x PacBio CCS數(shù)據(jù)Polish后,BUSCO完整性比例最高,約為97.43%,說明了前期推測的準(zhǔn)確性,即可利用高深度的Nanopore數(shù)據(jù)進(jìn)行組裝以提升基因組組裝指標(biāo),進(jìn)而利用低深度的PacBio CCS數(shù)據(jù)提升基因組完整性。

4.?不同深度CCS 數(shù)據(jù)Polish后二代數(shù)據(jù)回比結(jié)果

利用5x,10x,15x和20x的PacBio CCS數(shù)據(jù)對基因組進(jìn)行Polish,然后利用50x的二代數(shù)據(jù)回比到基因組上,最后發(fā)現(xiàn)回比率相當(dāng),雙端比對效率97%左右。

5.?通過將20?x?CCS數(shù)據(jù)分別回比到10 x PacBio CCS polish及100 x Nanopore+50 x Illumina Polish后基因組,截取基因組上特性區(qū)域,進(jìn)行組裝基因組單堿基準(zhǔn)確性的比對與評估,發(fā)現(xiàn)10?x?PacBio CCS polish后的結(jié)果提升效果明顯,我們挑選了幾個實例如下:

區(qū)域1:

PacBio CCS回比結(jié)果(10x CCS Polish基因組)
PacBio CCS回比結(jié)果(100 x ONT+50 x Illumina Polish基因組)

區(qū)域2:

PacBio CCS回比結(jié)果(10x CCS Polish基因組)

PacBio CCS回比結(jié)果(100x Nanopore+50x Illumina Polish基因組)

上述分析結(jié)果中,進(jìn)一步證實了前期的推測,利用Nanopore超長讀長的優(yōu)勢,組裝獲得高連續(xù)性基因組(Contig N50 約10 Mb),同時結(jié)合PacBio CCS高準(zhǔn)確性測序,進(jìn)一步提升基因組中單堿基的準(zhǔn)確度,即魚和熊掌可兼得。高連續(xù)性基因組的獲得,對后續(xù)功能基因定位,結(jié)構(gòu)變異檢測具有重要的意義;同時高準(zhǔn)確的基因組的獲得,對于超大基因組,多倍體基因組等復(fù)雜基因組的LTR的熱點區(qū)域的研究更具突破性的意義。除此之外。在很多動植物基因組上的確存在高度復(fù)雜的區(qū)域,即使通過高深度PacBio?CCS數(shù)據(jù)依然無法矯正,這就需要通過其它相應(yīng)的技術(shù)及軟件參數(shù)整合來提升基因組的準(zhǔn)確性。

四、雙平臺(Nanopore+PacBio)基因組De novo高分文章賞析

文章案例1:同源多倍體紫花苜?;蚪M
期刊:Nature Communications

發(fā)表時間:2020年5月
基因組De novo策略:PacBio CCS+ONT+ALLHiC

在對同源四倍體紫花苜蓿(Medicago sativa?L.)基因研究中,首先利用了70 GB,~22x PacBio CCS數(shù)據(jù)進(jìn)行基因組組裝,組裝獲得紫花苜蓿基因組大小3154 Mb,Contig N50=459 kb, 然后利用ALLHiC進(jìn)行同源染色體組群的劃分,最后通過Hi-C互作熱圖、遺傳圖譜共線性、ONT數(shù)據(jù)回比、BUSCO完整性、轉(zhuǎn)錄組對基因組完整性等進(jìn)行評估,值得注意的是在ONT數(shù)據(jù)回比評估中(Table 3),文中篩選了99 GB ONT long reads中的最長200條reads(ranged from 95 to 263 Kb)進(jìn)行回比,發(fā)現(xiàn)89%的的reads都能比對到single染色體上,結(jié)合其它評估方法,進(jìn)一步說明了組裝及染色體位置的準(zhǔn)確性。

文章案例2:小墊柳基因組
期刊:Nature Communications

發(fā)表時間:2019年11月
基因組De novo策略:ONT+PacBio +HiC

在小墊柳(Cushion willow)基因組組裝中,首先利用SMARTdenovo對糾錯后的74xONT數(shù)據(jù)進(jìn)行組裝,然后分別利用125xPacBio數(shù)據(jù)(two rounds )與Illumina數(shù)據(jù)(five rounds )進(jìn)行polish,基因組完整性評估后,利用Hi-C將Contig掛載到染色體水平,最終組裝獲得小墊柳基因組大小339.588 Mb,Contig N50=9.522 Mb。?(Table 4)

五、百邁客Nanopore、PacBio平臺動植物基因組合作文章總覽(部分)

北京百邁客生物科技有限公司自2015年引入Pacbio測序平臺,2017年初引入Nanopore測序平臺以來,截止到目前百邁客已擁PacBio平臺:RS Ⅱ、PacBio Sequel、PacBio sequel Ⅱ;Nanopore 平臺:PromethION-48、PromethION-β、Nanopore GridION、MinION,擁有主流三代測序儀,尤其針對復(fù)雜超大基因組測序,百邁客生物具有三代測序通量,以滿足超大基因組的組裝需求。同時PacBio和Nanopore兩大主流三代測序平臺各自及組合經(jīng)驗,為老師們提供了可參考且全面優(yōu)質(zhì)的選擇!選擇我們,提供專屬于您基因組套餐!

百邁客現(xiàn)提供測序分析+分子試劑一站式解決方案:基因表達(dá)量驗證:反轉(zhuǎn)試劑盒+qPCR試劑盒;SNP驗證:PCR Mix;克隆驗證:PCR Mix+無縫克?。籇NA、RNA提取試劑盒解決疑難物種提取。期待與您的合作?。?!
參考文獻(xiàn):
1.?Midha, M. K.?et al. Long-read sequencing in deciphering human genetics to a greater depth.?Human Genetics(2019).
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