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 分類: 醫(yī)學研究

本研究使用一組基因敲除的人類胚胎干細胞(ESC)系,利用二代和nanopore三代DNA甲基化測序技術(shù),分析了DNA甲基化轉(zhuǎn)移酶reader和DNA去甲基化酶eraser對DNA甲基化景觀的獨立和組合影響。比較了14種不同的人ESC品系野生型(WT)和敲除型的全基因組甲基化水平,發(fā)現(xiàn)TET酶被集中招募到整個基因組中成千上萬的體細胞增強子,但是只要存在DNMT3,TET酶就在多能細胞中保持高度甲基化。TETs在整個基因組中也具有更廣泛的活性,需要DNMT3表達來維持穩(wěn)態(tài)甲基化水平??傊?,不同類別的酶在基因組局部和整體是競爭關(guān)系。

 

研究背景

哺乳動物基因組通常顯示高水平的CpG甲基化,除了大多數(shù)CpG密集的啟動子區(qū)域,以及某些在發(fā)育上重要的增強子區(qū)域。體細胞DNA甲基化態(tài)勢總體穩(wěn)定地傳播,而與衰老和疾病相關(guān)的全局模式發(fā)生了變化。相反,細胞分化過程中CpG甲基化的發(fā)育調(diào)節(jié)通常反映了對轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合的局部重編程。

從頭DNA甲基轉(zhuǎn)移酶DNMT3A和DNMT3B負責添加甲基以生成5-甲基胞嘧啶(5mC),而DNMT1則主要用于傳播預(yù)先建立的DNA復制修飾。相比之下,TET酶(TET1,TET2和TET3)氧化5-甲基胞嘧啶,生成5-羥甲基胞嘧啶(5hmC)或進一步的氧化物,去除甲基基團。從頭甲基化和去甲基化對于正常發(fā)育都是必不可少的,敲除會導致胚胎或產(chǎn)后早期致死。每種酶似乎發(fā)揮特定角色作用,例如,DNMT3B優(yōu)先募集到衛(wèi)星重復序列和轉(zhuǎn)錄活躍基因;DNMT3A似乎在低甲基化增強子的周圍,被稱為“峽谷”的延伸的低甲基化結(jié)構(gòu)域和發(fā)育平衡的啟動子上,TET1和TET2起相反作用以維持低甲基化狀態(tài);TET2可能還具有調(diào)節(jié)轉(zhuǎn)錄延伸的功能。

尚無研究直接比較喪失所有去甲基酶和甲基轉(zhuǎn)移酶化對轉(zhuǎn)錄和基因組調(diào)控以及細胞活性的影響。為了檢查去除所有DNA甲基化活性調(diào)節(jié)蛋白的分子后果,作者生成了在DNMT3A和-3B以及所有3個TET蛋白均缺失的五元敲除( pentuple-knockout,PKO)人類ESC進行相關(guān)研究。

 

研究方法

構(gòu)建DNMT 2個蛋白和TET 3個蛋白分別敲除或共敲除的人胚胎干細胞系ESC;

二代WGBS:檢測CpG甲基化水平以及與WT相比分析差異甲基化區(qū)域DMR,鑒定DNMT3A/3B敲除ESC中保守的DMR:c-DKO-DMR;TET敲除ESC中c-DKO-DMR分析;TET敲除后重新過表達TET分析甲基化水平;小鼠ESC相關(guān)細胞系檢測甲基化分析保守性;

nanopore三代DNA測序分析甲基化和結(jié)構(gòu)變異SV:評估純合L1Hs元件DNA全長序列甲基化狀態(tài);

全基因組氧化亞硫酸氫鹽測序(oxBS)分析5hmC甲基化修飾;

ENCODE和其他公開發(fā)表chip-seq數(shù)據(jù)分析組蛋白修飾等染色體分布;其他已發(fā)表甲基化數(shù)據(jù)輔助分析;

DKO細胞RNA-seq ?分析c-DKO-DMR與基因表達關(guān)系;

hairpin亞硫酸氫鹽測序分析是否雙鏈對稱甲基化;

 

研究結(jié)果

1.DNMT3缺失時TET驅(qū)動基因組全局去甲基化

作者對DNMT或TET進行全面基因敲除,評估甲基化和去甲基化酶之間的相互作用。采用WT HUES8 ESC,并將Cas9與靶向DNMT3A和DNMT3B的sgRNA結(jié)合使用,獲得缺失所有從頭甲基轉(zhuǎn)移酶活性的HUES8雙敲除(double-knockout,DKO)ESC。并獲得先前生成的TET1-/-、TET2-/-、TET3-/-三敲除(triple-knockout,TKO)ESC以及TKO額外敲除DNMT3B衍生的四敲除(quadruple-knockout,QKO)ESC。然后,進一步突變HUES8 QKO中的DNMT3A,以生成DNMT3A-/-、DNMT3B-/-、TET1-/-、TET2-/-、TET3-/-PKO ESC,建立了新的細胞系( pentuple-knockout)PKO ESC(圖1a,頂部)。所有敲除的細胞系在形態(tài)上都沒有異常,并表達了自我更新和多能性相關(guān)基因,這表明在未分化狀態(tài)下不需要DNMT3和TET表達。通過二代全基因組亞硫酸氫鹽測序(WGBS)來研究這些品系中的全局DNA甲基化模式,在所有樣品中檢測到670萬個匹配的CpG,其覆蓋率≥10x。如預(yù)期的那樣,HUES8 WT顯示出較高的平均CpG甲基化水平(WT,0.78;圖1a,底部)。經(jīng)過6次傳代后,DNMT3無效的ESC中的總體甲基化水平降低了0.09(DKO,0.69),而TET無效的ESC中的總體平均水平僅增加0.01(TKO,0.79)。有趣的是,當在無TET的細胞中敲除從頭甲基轉(zhuǎn)移酶后,在第6代觀察到幾乎沒有變化(QKO,0.78;PKO,0.77)。這些結(jié)果表明,DNMT3缺失后,大部分DNA去甲基化取決于TET活性。

圖1上

 

2.多能細胞中DNMT和TET之間的局部競爭

為了進一步研究這種甲基化缺失,接下來從另一個人類ESC系(HUES64)(包括2個獨立的DKO克?。ˋ和B))WT和DKO細胞進行了甲基化測序,并將甲基化水平與先前衍生的18個單DNMT3A-/-(3AKO)和單DNMT3B-/-(3BKO)敲除數(shù)據(jù)作比較(圖1b)。兩種不同的雄性WT ESC似乎具有可比性,具有相似的整體甲基化平均值(HUES64,0.79;HUES8,0.78),并且在1kb分辨率上具有較高的相關(guān)性(Pearson系數(shù)=0.93)。有趣的是,盡管第22代的單DNMT3基因敲除仍保持高度甲基化(3AKO,0.81;3BKO,0.79),但2個HUES64 DKO克隆僅經(jīng)過3代后甲基化降低至0.70(圖1b)。當我們以堿基對的分辨率檢查數(shù)據(jù)時,觀察到2個不同的動態(tài)類別:0.1-0.2的細微下降,影響了整個基因組范圍內(nèi)約10%的CpG,以及,在CpG島內(nèi)局部發(fā)生的甲基化幾乎完全喪失的CpG位點(圖1c)。使用嚴格的標準(甲基化差異> 0.6,P <0.01,F(xiàn)檢驗)來定義差異甲基化區(qū)域(DMR)。DKO-DMR在3個DKO譜系上都非常一致(圖1c,d)。因此,定義了在所有3個樣品中均被甲基化的“一致性”的11,430個cDKO-DMR,cDKO-DMR始終保持較低水平(平均WT,0.749;DKO,0.086),平均長度為688個堿基對(bp)。WT ESC中大約三分之一cDKO-DMR鄰近低甲基化區(qū)域,例如CpG島和轉(zhuǎn)錄起始位點(稱為“1類”),而其余的cDKO-DMR則位于其他高度甲基化的區(qū)域(內(nèi)含子或基因間),具有明顯的高甲基化邊界(稱為“第2類”;圖1e–h)。幾乎所有的cDKO-DMR(93%)都被DNMT3A或-3B甲基化,僅在DKO中被完全去甲基。

圖1下

 

由于這些結(jié)果強烈暗示了一種主動的去甲基化機制,作者研究了在TET敲除的HUES8細胞系(TKO,QKO和PKO)中cDKO-DMR的甲基化水平。在沒有TET的情況下,先敲除DNMT3B,然后再敲除DNMT3A,不會導致cDKO-DMR去甲基化(圖1i)。即使經(jīng)過20次傳代,PKO細胞中cDKO-DMR甲基化水平也僅微弱下降。此外,在TKO細胞中,許多1類cDKO-DMR周圍的區(qū)域獲得了甲基化,這進一步暗示了局部去甲基化過程中的TET活性。總之,人類多能性細胞中有一些依賴于DNMT3A或-3B的獨特且高度甲基化的區(qū)域,這些區(qū)域在缺少它們的情況下會經(jīng)歷快速的TET介導的去甲基作用。

 

3.TET在cDKO-DMR處顯示持續(xù)的活性

為了驗證cDKO-DMR是否依賴并持續(xù)誘導TET活性,利用PiggyBac轉(zhuǎn)座將外源TET1(短isoform簡稱TET1s)、TET2和TET3重新引入PKO細胞中,并使用WGBS測量了總體甲基化水平(圖2a)。在異位表達每種蛋白質(zhì)后,PKO細胞的總體平均甲基化水平從第20代的0.73明顯降低到了異位表達每種蛋白質(zhì)后的0.61、0.59和0.54,而僅用轉(zhuǎn)座酶轉(zhuǎn)染的對照細胞保持穩(wěn)定(平均值=0.70;圖2b)。重新引入任何TET酶可在很大程度上恢復TKO細胞中異常高甲基化的區(qū)域,誘導快速的cDKO-DMR去甲基化(圖2c-e)。從機理的角度來看,TET1s亞型缺乏CXXC結(jié)構(gòu)域,無法募集至未甲基化的CpG密集區(qū)域,但TET1和TET2 rescue結(jié)果之間無明顯差異,支持了CXXC結(jié)構(gòu)域無關(guān)的募集機制。TET及其作用相反的酶在cDKO-DMRs上的持續(xù)動態(tài)也得到了已發(fā)表的染色質(zhì)免疫沉淀的支持,隨后進行ChIP-seq,該數(shù)據(jù)表明WT ESC中DNMT3B和TET1均富集,盡管富集在比相當狹窄且定義明確的cDKO-DMR邊界更寬區(qū)域。最后,進行了全基因組氧化亞硫酸氫鹽測序(oxBS),并在WT細胞中發(fā)現(xiàn)了5hmC的顯著局部富集(平均cDKO-DMRs,0.07;背景,0.01;圖2f)。

 

圖2

 

綜上所述,這些結(jié)果證實,TET酶被持續(xù)招募到整個基因組中成千上萬個基因座,并且如果不存在DNMT3活性,則可以指導快速、局部去甲基化。

 

4.進化上年輕的反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座子中動態(tài)募集DNMT-TET

cDKO-DMR改變穩(wěn)健而√確地改變其甲基化狀態(tài)方式表明它們可能與調(diào)控元件重疊。一個小的子集包括L1Hs或L1PA長散布的核元件(LINEs)的5’非翻譯區(qū)(UTR),它們充當其功能啟動子,DNMT3敲除后通常顯示出進化年齡和CpG密度依賴性去甲基(圖3a,b)。這些區(qū)域在WT ESC中還顯示出高于預(yù)期的5hmC富集,支持連續(xù)的TET募集(圖3b)。為了進一步研究,專注于人類特異性的L1Hs元件,并使用牛津納米孔的MinION平臺生成長reads(平均長度=8.9kb),從而能夠z確比對和評估HUES64 ESC WT和DKO,以及HUES8 ESC WT,TKO和PKO的LINE特異性甲基化狀態(tài)。(用nanopolish檢測了甲基化以及sniffle軟件分析SV,sniffile鑒定到的L1Hs元件有純合、雜合或缺失,只有純合且長度至少為6kb的用于后續(xù)分析。)在野生型細胞中,7%的L1Hs 5’UTR(每個樣品中全長覆蓋reads條數(shù)為207)已經(jīng)被低甲基化(圖3c)。盡管經(jīng)常沒有通過嚴格的DMR判斷標準,但在DNMT3A和DNMT3B敲除后91%的WT甲基化元件被去甲基(圖3c)。去甲基化依賴于TET表達,只有一小部分在PKO細胞中顯示丟失(圖3c)。根據(jù)它們的甲基化動力學劃分單個LINE后,無法查明與甲基化狀態(tài)一致的任何單核苷酸多態(tài)性,這表明DNMT/TET募集背后的機制更為復雜。值得注意的是,在DKO ESC中保持甲基化的17個L1Hs 5’UTR具有較低的CpG密度和GC含量,這可能表明較高的CpG密度有利于TET募集和去甲基化。似乎LINE 5’UTR對DNMT3/TET表達高度敏感并且可以快速切換甲基化狀態(tài),甲基化狀態(tài)對于表達DNMT3的多能細胞中的大多數(shù)元件都是有利的。

圖3

 

5.體細胞增強子被多能細胞中的DNMT3和TET活性靶向

盡管TET可以募集到LINE 5’UTR,但它們更頻繁地定位于啟動子或活性增強子,使它們保持低甲基化狀態(tài)。的確,有7%的cDKO-DMR與低甲基化的活性增強子相鄰,支持了先前的證據(jù)表明DNMT3s保護了增強子的邊界免受擴展的低甲基化作用(圖3a,d,e)??紤]到TETs在活性增強子中的典型作用,作者認為也可能代表僅在其他細胞狀態(tài)被激活時才經(jīng)歷去甲基化的調(diào)節(jié)元件。令人驚訝的是,有85%的cDKO-DMR與至少一種先前定義的組織特異性增強子重疊,并且在相關(guān)的細胞類型中被特異去甲基化(圖3a,f,g)。盡管cDKO-DMR幾乎總是體細胞增強子,但事實并非如此:許多體細胞增強子已經(jīng)在ESC中甲基化,在其相關(guān)組織中保持高度甲基化,或者盡管在其他發(fā)育過程中失去了甲基化,但在ESC中并未顯示出TET依賴性去甲基化(圖3h)。為了探索DMR的穩(wěn)定性,進一步傳代了HUES64 DKO克隆A細胞并進行了WGBS。在經(jīng)過28次無DNMT3活性的傳代后,鑒定到增加了59,618個DKO-DMR,其中79%與推定的組織特異性增強子重疊。在后期傳代的DKO細胞中,約有三分之一的體細胞增強子仍保持甲基化狀態(tài)。為了檢查增強子去甲基化的能力是否與發(fā)育時期相關(guān)(它們在發(fā)育過程中被激活時),利用最近發(fā)表的數(shù)據(jù)集,詳細介紹了從HUES64 ESCs到胰島分化的9個階段中增強子的激活和甲基化動力學。有趣的是,在分化的每個階段,相似比例的增強子與DKO-DMR重疊,在末端分化的階段,其頻率略高。盡管是推測性的,與ESC分化之間缺乏明顯聯(lián)系表明,一部分胚胎和成年組織特異性增強子可能以依賴于DNMT3和TET的持續(xù)和相反功能的狀態(tài)存在。

6.ESC中體細胞增強子的DNA甲基化缺失影響基因表達

作者想知道如何將TET募集到這組高度甲基化的體細胞增強子中,以及失去主動DNMT3募集的影響會是什么。cDKO-DMR具有高于背景的CpG密度(3.2%),但這尚未分類,因為大多數(shù)具有匹配CpG密度的1-kb區(qū)域在DKO細胞中不會丟失甲基化。當在WT ESC中尋找cDKO-DMR與選定的表觀遺傳特征之間的關(guān)聯(lián)時,發(fā)現(xiàn)它們通常更富集在開放染色質(zhì)和H3K4me1富集區(qū)域,而不是H3K27ac富集區(qū)域,后者通常與參與轉(zhuǎn)錄的“活性”增強子相關(guān)(圖3i)。盡管經(jīng)常重疊,但H3K4me1富集仍然不足以預(yù)測cDKO-DMR。此外,僅約10%的富含H3K4me1的體細胞增強子也富含H3K27me3,表明不存在經(jīng)典的“平衡”染色質(zhì)狀態(tài)。盡管可以確認這些區(qū)域在分化后受到組織特異性轉(zhuǎn)錄因子的束縛,但并未發(fā)現(xiàn)ESC增強子相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子的富集。然后,將查詢擴展到其他ESC表達的轉(zhuǎn)錄因子,包括來自WT HUES64 ESCs34的8個ChIP-seq數(shù)據(jù)集和H1 ESC細胞系ENCODE中63個ChIP-seq數(shù)據(jù)集。即使在更大的轉(zhuǎn)錄因子集上,也未在cDKO-DMR邊界內(nèi)發(fā)現(xiàn)任何明顯的富集,也未觀察到任何已知因子的一致序列基序motif。因此,TET的募集可能取決于上述集合中未包括的轉(zhuǎn)錄因子或替代策略,例如通過非編碼RNA,或者它可能涉及更復雜的調(diào)節(jié)機制或相互作用,尚待闡明。

最后,探討了是否可以將DKO-DMR定位于基因并評估潛在的調(diào)控作用。平均而言,cDKO-DMR位于距轉(zhuǎn)錄起始位點48 kb處,并且可以通過接近6,594個基因進行分配,這不允許進行有意義的通路或相互作用分析。相反,進行RNA測序(RNA-seq),以識別這些體細胞增強子的甲基化缺失是否影響基因表達。實際上,晚期傳代DKO細胞與分化相關(guān)的基因顯著上調(diào)(n=2,455),例如EOMES、SOX17、TGFB2、MSX2、SOX1和SIX1。盡管無法區(qū)分是直接作用還是間接作用,但到第6代,這些基因中已有526個已經(jīng)顯示出顯著的差異表達。在第28代,與差異表達基因相關(guān)的DKO-DMR基本上更接近其基因,另外三分之二的差異表達基因與至少一種DKO-DMR相關(guān)。這些趨勢還支持了靶向調(diào)控元件的去甲基化與基因表達上調(diào)之間的潛在聯(lián)系。

7. cDKO-DMR是保守的,與多能性有關(guān)

為了探索這種局部調(diào)節(jié)的動態(tài)甲基化的保守性,在小鼠表皮干細胞(EpiSCs)中突變了Dnmt3a和Dnmt3b,因為它們代表了與人類多能細胞最接近的發(fā)育和分子類似物。在第4步對WT和DKO細胞進行了WGBS測序,并鑒定了3888個與人類DKO-DMR具有相似特性的DMR,與82%的推定體細胞增強子重疊。雖然數(shù)量、√確序列和坐標未直接在物種之間map,但小鼠DKO-DMR出現(xiàn)在非常相似的位置且與直系同源基因接近(圖4a)。因此,在體細胞增強子處甲基化轉(zhuǎn)換的機制和這些區(qū)域的調(diào)控模式都看起來非常保守。

圖4

 

由于體細胞也表達DNMT和TET,是否DNMT3/TET在體細胞增強子上的相互作用是多能性所獨有的,還是在分化后仍能保留?研究了發(fā)育各個階段中缺乏DNMT3活性:這些包括在血清/白血病抑制因子(LIF)中培養(yǎng)的小鼠ESC,它比EpiSC代表更幼稚的多能狀態(tài)。在大多數(shù)體細胞不表達具有催化活性的DNMT3B的前提下,還檢查了純合Dnmt3a-/-小鼠的組織,因此DNMT3A的丟失將產(chǎn)生缺乏從頭甲基轉(zhuǎn)移酶活性的“ DKO樣”細胞(圖4b)。然后,在第4代對WT和DKO ESC以及8天齡WT和Dnmt3a-/-小鼠的腦、結(jié)腸、肝和肺組織進行了WGBS(圖4b)。與EpiSCs相比,ESC的DKO-DMR多了10倍(n=63,971),而在組織中(大腦,146;結(jié)腸,511;肝臟,318;肺,252;)減少了十倍。因此,cDKO-DMR的動態(tài)調(diào)節(jié)似乎僅限于多能細胞狀態(tài),隨著發(fā)育的進行,TET靶向基因座的數(shù)量大大減少。在每種情況下,73-82%的DMR與先前定義的小鼠組織特異性增強子重疊。體細胞Dnmt3a KO DMR優(yōu)先偏愛位于CpG島和shores附近的1類亞組,這表明在這種情況下,TET在很大程度上起到了保護未甲基化區(qū)域邊界的作用。

為了補充小鼠數(shù)據(jù),重新分析了從HUES64 WT和DNMT3A KO人類ESC分化為有絲分裂后運動神經(jīng)元的WGBS數(shù)據(jù),在該系統(tǒng)中,細胞在第2天失去DNMT3B的蛋白質(zhì)表達,從而在存活的3AKO細胞中產(chǎn)生DKO樣狀態(tài)。細胞在約12天內(nèi)沒有DNMT3活性,即便連續(xù)不斷地表達TET1-3但是cTKO-DMR仍保持高度甲基化,這進一步暗示了參與該過程的關(guān)鍵因素可能僅以多能狀態(tài)表達。

8.TET酶也在整個基因組中廣泛地去甲基化

在確定DNMT和TET以多能性特異性方式調(diào)節(jié)一部分體細胞增強子元件后,在DKO和PKO品系中觀察到全基因組逐漸去甲基化。為避免將總體測量結(jié)果與上述目標DNMT3或TET活性混淆,排除了任何一對樣品之間鑒定出的所有低嚴格DMR(n=238,497)。作為所有體細胞增強子區(qū)域。值得注意的是,在存在或不存在TET的情況下,DNMT3的丟失仍然導致每次傳代的總體平均甲基化降低分別為0.0028和0.0037(圖5a)。隨后,估計每個細胞周期DNA甲基化模式的保真度為99.75和99.64(估計每傳代6天和每傳代4天,DKO和PKO細胞的群體倍增時間,細胞在培養(yǎng)條件下生長時其數(shù)目倍增所需的時間,分別為28.8h和24h)。

異染色質(zhì)內(nèi)的甲基化缺失被認為是由于低DNMT1保真度和有絲分裂所致。為了支持該模型,觀察到了僅表達DNMT1的PKO細胞在異染色質(zhì)區(qū)域內(nèi)甲基化的優(yōu)先缺失。相反,DKO細胞在常染色質(zhì)中表現(xiàn)出優(yōu)先的甲基化缺失,這暗示著來自全基因組TET活性的其他貢獻(圖5b)。低5hmC信號分布在整個WT ESC的基因組中,包括在惰性的基因間區(qū),其在常染色質(zhì)中的含量較高(圖5b,c)。因此,當沒有從頭甲基化的DNMT時,甲基化在WT 5hmC高的區(qū)域中減少*多(圖5d,e)。

圖5

 

將WT HUES64 ESC分化為有絲分裂后的運動神經(jīng)元,其中5hmC不能通過分裂被動稀釋,以更具體地跟蹤TET的參與度和催化活性。培養(yǎng)60天后,基因(特別是表達的基因)和基因間基因座內(nèi)富集了5hmC水平,其中*大的增加發(fā)生在惰性染色質(zhì)內(nèi),支持了TET的廣泛氧化(圖5f,g)。因此,TET通過運動神經(jīng)元以及ESC的基因組保持了廣泛氧化甲基胞嘧啶的能力。

通常,如果不被DNMT3A或DNMT3B抵消,這種活性將導致胞嘧啶修飾的連續(xù)轉(zhuǎn)換和整體甲基化的降低。在這種范式下,人們可能會期望ESC在TET丟失后顯示出整體甲基化增加,因為這將使平衡向DNMT3活性轉(zhuǎn)移。與期望相反,并且如先前在癌細胞中所指出的,與匹配的WT相比,在缺乏TET的細胞中也觀察到了輕微的下降。與WT相比,這可能與TKO細胞的生長速率增加有關(guān),這也可能影響甲基化維持。

為了解DNMT和TET的競爭活性是否有助于甲基化異質(zhì)性,如先前懷疑的富含H3K4me1的增強子區(qū),進行了hairpin亞硫酸氫鹽測序,以測量同一分子CpG二聚體上對稱的胞嘧啶甲基化。在沒有從頭DNMT和TET的情況下,發(fā)現(xiàn)了較少的半甲基化二倍體(PKO中為4.48%,WT細胞中為8.89%),這表明DNMT和TET共同作用以在單個基因座上產(chǎn)生表觀遺傳變異。(在哺乳動物中,DNA甲基化通常以對稱的方式出現(xiàn)在CpG核苷酸中,即如果一個CpG上的一個胞嘧啶(C)出現(xiàn)甲基化,那么其互補鏈上的相應(yīng)胞嘧啶(C)也會被甲基化)。全基因組TET活性的隨機性似乎會在細胞群體內(nèi)產(chǎn)生甲基化異質(zhì)性。

 

參考文獻:

Charlton J, Jung EJ, Mattei AL, et al. TETs compete with DNMT3 activity in pluripotent cells at thousands of methylated somatic enhancers [published online ahead of print, 2020 Jun 8].?Nat Genet. 2020;10.1038/s41588-020-0639-9. doi:10.1038/s41588-020-0639-9

 

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